冬季一到,陆续又接到几个用户反映Simgen快速质粒DNA小量试剂盒提取的质粒DNA存在RNA污染。小新查看用户的投诉记录,发现了几个特点:1.以往的年份也有客户投诉过相同的问题。2. 投诉率不高,似乎只有某些实验室有投诉。3.投诉总是发生在冬季,夏季则从来没有投诉过。以上种种迹象表明试剂盒本身可能不存在问题,诱导的因素是温度,所以小新猜测应该是温度降低导致RNase A活性降低这一可能性最大。为了验证猜测,小新设计了模拟冬夏季温度条件下进行质粒DNA提取的实验。
实验目的:
试剂盒使用的环境温度对RNaseA活性的影响。
实验材料:
含质粒的细菌过夜培养物
快速质粒DNA小量试剂盒(Simgen,Cat.No. 1005050)
电子恒温水浴锅(上海宜昌仪器纱筛厂)
冰箱(Haier,BCD-130H)
台式离心机(eppendorf Centrifuge 5415 D)
旋涡震荡器(越新仪器,XH-C)
超微量分光光度计(Simgen Cat.No.sim100)
电泳仪(北京六一仪器厂,DYY-6C型)
实验方法:
取一盒快速质粒DNA小量试剂盒,加好RNase A和无水乙醇,将除了BufferⅡ外的所有试剂都分成两份,其中一份放到37℃的水浴锅中,模拟夏天的温度;另一份放到4℃冰箱,模拟冬天室温。BufferⅡ放在37℃的水浴锅中(因为BufferⅡ低温易结晶,冬季也会先放在37℃水浴)。
为了更容易观察到RNA污染的效果,小新特别用了最大量(5 ml)的细菌培养物,分别用这两份不同温度存放的试剂提取质粒DNA,实验步骤如下:
1. 12000 rpm离心30秒收集 5 ml 过夜培养的细菌,弃尽培养基。加入 250 μl已加入 RNase A 的 Buffer I。
2. 加入250 μl Buffer II ,温和并充分地翻转离心管 4-6次。
3. 加入 350 μl Buffer N8,温和并充分地翻转离心管直至溶液中残留的蓝色沉淀全部消失,转变为淡黄色沉淀。
4. 最高速(≧12000 rpm)离心 2 分钟。
5. 将核酸纯化柱置于 2 ml 离心管中,将步骤 4 中的上清液倒入核酸纯化柱中,盖上管盖,12000 rpm离心 30秒。
6. 弃 2 ml离心管中的滤液,将核酸纯化柱置回到 2 ml离心管中,在核酸纯化柱中加入800 μl Buffer W2, 盖上管盖,12000 rpm离心30秒 。
7. 弃 2 ml离心管中的滤液,将核酸纯化柱置回到 2 ml离心管中,最高速(≧12000 rpm)离心1分钟。
8. 弃 2 ml离心管,将核酸纯化柱置于一个洁净的 1.5 ml离心管中,在纯化柱的膜中央加入60 μl Buffer E ,盖上管盖,室温静置1分钟,12000 rpm离心30秒。
9. 弃纯化柱,得到质粒DNA。
实验结果
1. 在超微量分光光度计上用试剂盒的Buffer E调零,测量洗脱下来的DNA,结果如下:(表一)
样品名称 | Abs260 | Abs280 | Abs230 | 260/230 | 260/280 | 浓度ng/μl |
4℃ | 11.679 | 5.788 | 5.581 | 2.09 | 2.02 | 583.9508 |
4℃ | 11.560 | 5.710 | 5.516 | 2.10 | 2.02 | 577.9800 |
4℃ | 9.761 | 4.839 | 4.518 | 2.16 | 2.02 | 488.0405 |
4℃ | 9.987 | 4.887 | 4.735 | 2.11 | 2.04 | 499.3611 |
37℃ | 5.280 | 2.668 | 2.529 | 2.09 | 1.98 | 263.9873 |
37℃ | 5.181 | 2.617 | 2.484 | 2.09 | 1.98 | 259.0307 |
37℃ | 5.254 | 2.644 | 2.522 | 2.08 | 1.99 | 262.6758 |
37℃ | 4.875 | 2.439 | 2.312 | 2.11 | 2.00 | 243.7359 |
2. 在1%的琼脂糖凝胶上,加入8 μl(加大上样电泳体积的目的是便于观察残留的RNA)洗脱的DNA,电泳5分钟(注意如果电泳时间太长,残留的RNA也会因弥撒而观察不到的),结果如下:
3. 将剩余的细菌室温放置到下午,再次用放在37℃水浴锅中的试剂提取质粒DNA,数据如下: (表二)
样品名称 | Abs260 | Abs280 | Abs230 | 260/230 | 260/280 | 浓度ng/μl |
37℃ 下午 | 4.494 | 2.284 | 2.122 | 2.12 | 1.97 | 224.7110 |
37℃ 下午 | 3.948 | 2.010 | 1.886 | 2.09 | 1.96 | 197.4044 |
37℃ 下午 | 3.982 | 2.039 | 1.904 | 2.09 | 1.95 | 199.0817 |
37℃ 下午 | 4.109 | 2.091 | 1.945 | 2.11 | 1.97 | 205.4341 |
4. 在1%的琼脂糖凝胶上,加入8 μl洗脱的DNA,电泳5分钟,结果如下:
实验结论
1. 从表一和图一可知,放置在4℃的试剂提取出来的质粒DNA中RNA含量明显比放置在37℃的试剂提取出来的质粒DNA中RNA含量多,验证了低温环境下快速质粒DNA小量试剂盒提取的质粒DNA中RNA污染会比较严重这一现象。
2. 从图二中可以看到,上午和下午提取的质粒DNA中的RNA残留情况虽然肉眼对比差异不明显,但是对比表一和表二的数据就可以发现,下午提取的质粒DNA的Abs260/280比上午提取的要小一些,浓度也低一些,说明下午提取的质粒DNA中RNA残留情况要低于上午提取的质粒DNA。
3. 尽管小新用37℃温育后的Buffer I、Buffer II、Buffer N8来模拟夏天的条件,但需要注意的一点是,环境温度仍然是不满足夏天条件的(比如离心管的温度、吸头的温度,离心机的温度等等),这应该是37℃温育试剂提取质粒DNA仍然残留有少量RNA的主要原因。
大家都知道RNA酶很皮实,耐高温,但是再怎么样终归还是酶,最适温度就是37℃(Simgen 质粒试剂盒中的RNA酶来自牛胰,牛的正常体温是38℃~39.5℃,所以最适温度可能还要再高一点)左右,一到冬季自然大打折扣。既然小新的实验验证了冬季RNase A活性降低是质粒提取试剂盒被投诉的主要原因,那小新就可以开始对症下药了:
1. 冬天提取质粒DNA的时候,直接把快速质粒DNA小量试剂盒放到恒温箱里温育(反正Buffer II冬天会结晶,就是需要提前温育的)到37℃后再使用。
2. 把实验室的空调开高一些,等温度升高后再做实验(记得有一年实验室一直不能重复出用户投诉的RNA污染结果,现在怀疑和空调温度打得太高了也有一定的关系)。
3. 不要急着做实验,把养好的细菌凉一凉再做(等个4~5个小时,因为细菌在不良的生长环境下会减少新陈代谢,RNA会自行降解掉一部分)。
4. 减少细菌的用量,RNA酶需要消化的RNA总量就减少了。
5. 最后一招,如果不缺钱,干脆再采购一支RNase A加到Buffer I中,那效果也是立竿见影的。
以上的解决方案中1~4条都是偷懒的行为,说明在了解事物本质的前提下,适当地偷懒反而能达到事半功倍的效果。