前几天,有个客户询问如何提取酵母的RNA,小新当时就推荐了超纯总RNA提取试剂盒,这个试剂盒的说明书中就有酵母的提取步骤。之后考虑到通用性极强的高多糖多酚植物总RNA试剂盒是不是效果会更好呢,于是决定实际测试一下。
实验目的
比较高多糖多酚植物总RNA试剂盒与超纯总RNA提取试剂盒提取酵母RNA的效果。
实验材料
新鲜培养的酵母、研钵、高多糖多酚植物总RNA试剂盒(Simgen Cat.No.5103050)、超纯总RNA提取试剂盒(Simgen Cat.No.5003050)
超微量电子天平(DENVER INSTRUMENT,TP-213)
旋涡震荡器(越新仪器,XH-C)
台式离心机(eppendorf Centrifuge 5415 D)
超微量分光光度计(Simgen Cat.No.sim100)
电泳仪(北京六一仪器厂,DYY-6C型)
实验内容
超纯总RNA提取试剂盒提取方法:
1. 将培养的酵母菌离心沉淀弃上清液,震荡悬浮,用移液枪吸取300 mg于研钵中,加入3 ml Buffer TL进行研磨。充分研磨后,吸取2管1.1 ml液体于1.5 ml离心管中。
2. 加入200 μl Buffer EX,旋涡震荡混匀,12000 rpm离心。
3. 吸取600 μl上层水相于新的1.5 ml离心管中,加入同体积70%乙醇,混匀后分两次加入核酸纯化柱中,离心弃滤液。
4. 在核酸纯化柱中依次加入500 μl Buffer WA和600 μl Buffer WBR洗涤。
5. 14000 rpm空离1分钟去除残留乙醇。
6.将核酸纯化柱放于RNase-Free的1.5 ml离心管中,加入50 μl RNase-Free Water,室温静置1分钟,离心洗脱得到酵母RNA。
高多糖多酚植物总RNA试剂盒提取方法:
1. 将培养的酵母菌离心沉淀弃上清液,震荡悬浮,用移液枪吸取300 mg于研钵中,加入1.8 ml已加入β-巯基乙醇的Buffer RCT进行研磨。充分研磨后,吸取2管700 μl液体于1.5 ml离心管中。
2. 加入600 μl Buffer EX,旋涡震荡混匀,12000 rpm离心。
3. 吸取350 μl上清液于新的1.5 ml离心管中,加入同体积Buffer K,混匀后转移到过滤柱过滤。
4. 在滤液中加入700 μl 70%乙醇,混匀后分两次加入核酸纯化柱中,离心弃滤液
5. 在核酸纯化柱中依次加入500 μl Buffer WA和600 μl Buffer WBR洗涤。
6. 14000 rpm空离1分钟去除残留乙醇。
7.将核酸纯化柱放于RNase-Free的1.5 ml离心管中,加入50 μl RNase-Free Water,室温静置1分钟,离心洗脱得到酵母RNA。
将提取到的RNA在超微量分光光度计上测量浓度和纯度,并进行琼脂糖凝胶RNA电泳检测。
实验结果
1. 在超微量分光光度计上用RNase Free Water调零,测量洗脱下来的RNA,结果如下:
其中1、2为高多糖多酚植物总RNA试剂盒提取的酵母RNA结果,3、4为超纯总RNA提取试剂盒提取的酵母RNA结果。
2. 在1%的琼脂糖凝胶上,加入5 μl提取到的RNA,电泳25分钟,结果如下:
实验讨论与分析
1. 从测得的浓度分析,高多糖多酚植物总RNA试剂盒提取到的RNA浓度稍高一点。再结合电泳分析,高多糖多酚植物总RNA试剂盒提取的RNA条带相对而言亮度更高,也更清晰,而超纯总RNA提取试剂盒提取到的RNA条带亮度则明显较暗。因此可以推断出超纯总RNA提取试剂盒提取到的RNA实际浓度可能比分光光度计测的数值更低,可能有较高比例的OD260吸收值其实是由小片段RNA所贡献(见电泳图泳道4、5底部)。
2. 综上所述,虽然两种试剂盒都可从酵母中提出RNA,且浓度和纯度单纯从分光光度计上分析都还不错,但结合电泳分析,高多糖多酚植物总RNA试剂盒在提取酵母RNA上更胜一筹。
3.之前的一篇文章(实测SIMGEN高多糖多酚植物总RNA试剂盒强大的通用性)中介绍过,针对那些高多糖多酚样本,需要使用高多糖多酚植物总RNA试剂盒,用超纯总RNA提取试剂盒提取往往会出现一些问题。而酵母细胞壁的主要成分是甘露聚糖和β-葡聚糖,这两者都属于多糖,占了细胞壁干重的60%,这可能是超纯总RNA提取试剂盒的提取效果不如高多糖多酚植物总RNA试剂盒的主要原因。延伸开来分析,一些丝状真菌的细胞壁中如果含较高多糖组分的,也应该选用高多糖多酚植物总RNA试剂盒提取RNA。